作者Abcbc123 (哇哈哈)
看板Biotech
標題WB蛋白跑不下去
時間Tue Apr 27 14:35:44 2021
求救
https://imgur.com/a/i033WuH
最近跑的WB都呈現這樣子,
壓得抗體已經是GAPDH,
但顯色的地方也不是目標分子量,
跑了好幾片都長這樣
(顯色有高有低,但都很醜,位置也不對)
sample是細胞蛋白
上膠 80V 160mA
下膠 120V 160mA
Running buffer:Tris Base 30g+glycine 144g+SDS 10ml 定容到1L
Transfer是半乾式,30V 400mA 1小時15分
看起來像蛋白沒有跑下去(?
但marker和dye都有跑到底了
會是sample沒有變性嗎?
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1F:→ Ianthegood: transfer沒壓緊 04/27 17:44
2F:推 Ianthegood: 上下膠pH有對嗎? 04/27 17:46
3F:→ blence: running buffer顯然不對 04/27 20:02
4F:推 moon0126: 應該是running buffer的問題 04/27 22:13
5F:推 darrenyo: Running buffer配方看起來是10X的... 04/28 00:45
6F:推 florasflanaa: 你算一下你的tris是0.25M,glycine1.92M,SDS用100% 04/28 01:24
7F:→ florasflanaa: 配完是1%,這是10Xbuffer的濃度,pH要調到8.3,tris 04/28 01:24
8F:→ florasflanaa: base非常鹼 04/28 01:24
9F:→ xxtomnyxx: SDS沒有100%啦,水溶液最多也20%,假設是10%那SDS濃度 04/28 02:10
10F:→ xxtomnyxx: 是對的。Tris-Glycine-SDS的配方是25 mM Tris base, 1 04/28 02:10
11F:→ xxtomnyxx: 92 mM Glycine, 0.1% SDS。Tris base 也有用 24.76 mM 04/28 02:10
12F:→ xxtomnyxx: 的就是 1 L加30克比較好秤。然後我個人強烈建議「不要 04/28 02:10
13F:→ xxtomnyxx: 調pH!」就算要調也絕對不要用 HCl 或 NaOH 調,請用G 04/28 02:10
14F:→ xxtomnyxx: lycine或Tris base 調pH。 04/28 02:10
15F:→ blence: SDS也是鹼,沒事別調pH,直接用就好 04/28 06:59
16F:→ blence: 產生的鹽跑膠時讓buffer過熱,只能用低電壓慢慢跑 04/28 07:00
17F:→ Abcbc123: 對對 running buffer是10倍的 用之前稀釋成1倍 沒有調pH 04/28 11:10
18F:→ Abcbc123: 值 04/28 11:10
19F:→ xxtomnyxx: 如果你上面寫的那個 1 L 是10倍的配法,假設你的SDS 10 04/28 22:14
20F:→ xxtomnyxx: mL 是指 10% SDS 加 10 mL,那你的 1 倍溶液中的 SDS就 04/28 22:15
21F:→ xxtomnyxx: 只有標準的 1/10.... 04/28 22:15
22F:推 yaes111: dye有跟sample混在一起再加熱變性過吧? 04/29 17:39
23F:推 Devilxxx: sample沒處理好? 05/02 18:50