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大家好 最近老師要我從合作醫生那邊取得的抽脂液 (liposuction)分離脂肪幹細胞 之前沒做過primary cell culture,所以有一些問題想請教一下板上的大大們 先列一下我的步驟 (參考一些paper後整理出來): 1. 抽脂液放冰上送往實驗室 2. 倒至50 ml離心管至20~25 ml左右高度,加入HBSS至50 ml,搖晃以wash 3. 離心:500 G 10分鐘 4. 以pipet將脂肪組織下的HBSS完全吸掉 5. 重複2.~4.以HBSS再wash一次 (若還有紅色液體 (可能是血液之類的)殘留則再繼續wash,避免影響collagenase作用) 6. 加入collagenase type I (量至少蓋過離心下來的脂肪組織) (2 mg/ml in HBSS, 300 U/mg, 0.22-um low protein binding filtered) 7. 37度水浴30~60分鐘,每5~10分鐘invert 5次 8. 加入等體積培養液 (alpha-MEM with 10% FBS, 1% PS)以中和collagenase 9. 離心:600 G 10分鐘,倒掉上清液 10. 加入10 ml ACK lysing buffer至pellet,室溫靜置5分鐘以溶掉紅血球 11. 離心:300 G 5分鐘,倒掉上清液 12. 以1 ml培養液回溶pellet,加入適當體積培養液後混勻,過40-um細胞過濾器 13. 加至適當dish或flask 14. 隔天將懸浮細胞吸掉,以PBS wash後換新培養液 步驟大概如上 想問的是 1. 檢體的運送 查過網路上的primary cell culture的經驗分享 大多是建議現採現做,但由於醫院和實驗室有約1小時車程的距離 所以打算讓它保存在4度的狀態運回實驗室 (以前實驗室學姐有教離心管內的細胞如果暫時沒做實驗可以放冰上,但好像不能放太久...) 但回去可能很晚無法做實驗了 有看到說法是可以放4度24~72小時,不知道正不正確... 所以想請教一下運送和保存的條件是否可以放4度? (可以的話我不會讓其超過24小時) 有經驗是不建議凍存 (-20或-80度),理由是產生的冰晶會破壞細胞 2. collagenase type I的濃度 看過有的paper是寫0.075%,有的是寫2 mg/ml 但具體作用好像是看digestion unit 但大家paper都沒寫,而每次廠商出貨的品質也不盡相同 (每批貨的digestion unit不會一樣) 想請問我這濃度是否OK? 3. 離心轉速 看過有的paper寫是用300 G,有的是用600 G 以前離心細胞都是用400 G (跟300 G差100 rpm) 不知道離心用600 G是否OK? 大概是這幾個問題想請教板上的大大 先謝謝大家了 --



※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc), 來自: 111.243.53.238 (臺灣)
※ 文章網址: https://webptt.com/m.aspx?n=bbs/Biotech/M.1574252176.A.B32.html
1F:推 tynse71864: 1. 別吧; 之前收 peripheral Φ, 把沒做完的細胞丟 11/23 12:34
2F:→ tynse71864: 在 50ml 放冰箱, 隔天全部黏在管底…… 11/23 12:34
3F:推 tynse71864: 運送插冰上可以,但我回實驗室就立刻種細胞了 11/23 12:39
4F:→ turtle24: 人類檢體盡量能當天弄完就好 11/23 14:05
謝謝您們的建議 ※ 編輯: MLSHBen (1.160.112.51 臺灣), 11/23/2019 15:33:13
5F:推 tynse71864: 3. 若300g 下的來就用 300即可,除非他 pellet看起來 11/24 12:57
6F:→ tynse71864: 就是下不太來 11/24 12:57







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