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大家好 最近老师要我从合作医生那边取得的抽脂液 (liposuction)分离脂肪干细胞 之前没做过primary cell culture,所以有一些问题想请教一下板上的大大们 先列一下我的步骤 (参考一些paper後整理出来): 1. 抽脂液放冰上送往实验室 2. 倒至50 ml离心管至20~25 ml左右高度,加入HBSS至50 ml,摇晃以wash 3. 离心:500 G 10分钟 4. 以pipet将脂肪组织下的HBSS完全吸掉 5. 重复2.~4.以HBSS再wash一次 (若还有红色液体 (可能是血液之类的)残留则再继续wash,避免影响collagenase作用) 6. 加入collagenase type I (量至少盖过离心下来的脂肪组织) (2 mg/ml in HBSS, 300 U/mg, 0.22-um low protein binding filtered) 7. 37度水浴30~60分钟,每5~10分钟invert 5次 8. 加入等体积培养液 (alpha-MEM with 10% FBS, 1% PS)以中和collagenase 9. 离心:600 G 10分钟,倒掉上清液 10. 加入10 ml ACK lysing buffer至pellet,室温静置5分钟以溶掉红血球 11. 离心:300 G 5分钟,倒掉上清液 12. 以1 ml培养液回溶pellet,加入适当体积培养液後混匀,过40-um细胞过滤器 13. 加至适当dish或flask 14. 隔天将悬浮细胞吸掉,以PBS wash後换新培养液 步骤大概如上 想问的是 1. 检体的运送 查过网路上的primary cell culture的经验分享 大多是建议现采现做,但由於医院和实验室有约1小时车程的距离 所以打算让它保存在4度的状态运回实验室 (以前实验室学姐有教离心管内的细胞如果暂时没做实验可以放冰上,但好像不能放太久...) 但回去可能很晚无法做实验了 有看到说法是可以放4度24~72小时,不知道正不正确... 所以想请教一下运送和保存的条件是否可以放4度? (可以的话我不会让其超过24小时) 有经验是不建议冻存 (-20或-80度),理由是产生的冰晶会破坏细胞 2. collagenase type I的浓度 看过有的paper是写0.075%,有的是写2 mg/ml 但具体作用好像是看digestion unit 但大家paper都没写,而每次厂商出货的品质也不尽相同 (每批货的digestion unit不会一样) 想请问我这浓度是否OK? 3. 离心转速 看过有的paper写是用300 G,有的是用600 G 以前离心细胞都是用400 G (跟300 G差100 rpm) 不知道离心用600 G是否OK? 大概是这几个问题想请教板上的大大 先谢谢大家了 --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc), 来自: 111.243.53.238 (台湾)
※ 文章网址: https://webptt.com/cn.aspx?n=bbs/Biotech/M.1574252176.A.B32.html
1F:推 tynse71864: 1. 别吧; 之前收 peripheral Φ, 把没做完的细胞丢 11/23 12:34
2F:→ tynse71864: 在 50ml 放冰箱, 隔天全部黏在管底…… 11/23 12:34
3F:推 tynse71864: 运送插冰上可以,但我回实验室就立刻种细胞了 11/23 12:39
4F:→ turtle24: 人类检体尽量能当天弄完就好 11/23 14:05
谢谢您们的建议 ※ 编辑: MLSHBen (1.160.112.51 台湾), 11/23/2019 15:33:13
5F:推 tynse71864: 3. 若300g 下的来就用 300即可,除非他 pellet看起来 11/24 12:57
6F:→ tynse71864: 就是下不太来 11/24 12:57







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