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Taqman assay最常用的是FAM或VIC兩種螢光 對於同一個基因表現,不知道分別使用不同螢光探針上機 那麼獲得的CT會不會有所不同? 平常的實驗會把control跟target加入同一種螢光偵測 所以不會遇到上面的困擾 只是目前實驗會需要在一個tube中同時加入FAM或VIC去偵測target表現 而control就不確定只用FAM即可,或要同時加入VIC? 因為target_FAM或許可以從control_FAM計算deltaCT 但是target_VIC也跟著control_FAM去計算deltaCT的話,就覺得有些怪怪的 這問題詢問專員,回覆提到理論上CT不受螢光種類而有差異 不過實際上的有沒有影響,還是詢問一下有沒有人有相關經驗 謝謝 --



※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc), 來自: 180.218.151.4
※ 文章網址: https://webptt.com/m.aspx?n=bbs/Biotech/M.1513000070.A.0FF.html
1F:推 qiet: 不同螢光強度當然有差 有差就可能影響單個樣品的Ct值,但理 12/12 19:56
Thermo的專員認為同一樣品,不同螢光的強度雖然有差,但CT應該會相同 不過沒data的話我是存疑
2F:→ qiet: 論上不影響不同樣品間的相對值,就像你用Sybr green測同一 12/12 19:56
3F:→ qiet: 個gene但用不同primer會有差異是差不多的 12/12 19:56
後面這兩句我看不懂 用貼近實驗的結果來做假設好了 在只放一對A gene primer的singleplex Taqman PCR reaction中 同時存在FAM與VIC兩種螢光probe用來偵測A gene表現, CT的部分,A_FAM=20,A_VIC=22 而internal control,GAPDH_FAM=15,GAPDH_VIC則是我的問題 假使如原廠的推測GAPDH_VIC=15,與GAPDH_FAM沒有差異 那A的兩個螢光都只要跟GAPDH_FAM算相對值即可,不需要再多買GAPDH_VIC來混合 結論就是A_FAM的表現量比較多 但是萬一GAPDH_VIC=/=15,或有幾個CT的差異 那我的A_FAM與A_VIC就必須依照各別的螢光去算相對值 這時候前面的結論就不一定正確了
4F:推 supray: 只看ddCt還OK,因為是把control樣本當1去做normalize, 12/13 00:10
5F:→ supray: 如1樓所說,比較的是不同樣本的表現量 12/13 00:11
6F:→ supray: 但你的比較方式就有點問題,只取dCt 12/13 00:12
7F:→ supray: 不同primer或不同probe,最好是要當成不同的target 12/13 00:14
8F:→ supray: 因為primer濃度,螢光強弱,threshold的值都會影響Ct 12/13 00:15
9F:→ supray: 在同個樣本間無法比較 12/13 00:16
我的最終目的當然是要比較ddCT 上面只是先聚焦在只有一個樣本時, A_FAM, A_VIC與GAPDH_FAM的相對量該如何比較 如果無法凸顯同一樣本內的A_FAM與A_VIC有所不同 自然就無法從接續往後不同樣本的實驗設計 如果我的理解沒錯 目前看起來就算是同一樣本,primer,濃度,實驗條件....種種因素都相同的情況下 上面兩位都認為改變不同的probe螢光,就會導致CT值改變的樣子 ※ 編輯: blence (180.218.151.4), 12/13/2017 01:36:20
10F:→ supray: 那就需要有一個確定是A_FAM,A_VIC target 1:1的樣本 12/13 01:25
11F:→ supray: 當作是你的標準品 12/13 01:25
※ 編輯: blence (180.218.151.4), 12/13/2017 01:41:16
12F:→ Invec: 將該片段進行TA cloning作為標準品 每次上機做絕對定量即可 12/14 13:27
13F:→ Invec: 標準曲線需分螢光做 12/14 13:29







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