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想請問有在做DNA bisulfite PCR的各位 我目前的實驗構想 是想去看在表現我目標基因的細胞 在一些stemness上甲基化程度是否受到影響 所以我的實驗流程如下: bisulfite sequence 1.抽control及表現我目標基因細胞的gnomic DNA 2.ZYMO DNA methylation kit 去modified gnomic DNA (500ng,是protocol建議的量) 3.ZYMO產物 用吸光值推算濃度,取100ng量跑PCR(用Hot star的DNA polymerase) 4.PCR product直接送定序 (因為還不知道會被甲基化的位置,所以想先用這種方式粗略的先分析) 但我目前的問題是: 1.PCR沒產物 這裡用的PCR primer primer的序列沒有CG所以只需考慮C-->T的規則 Tm分別為=48&55 (可以想到可能是兩個溫度差的太大了一點) 2.ZYMO KIT處理完後,其實產物的濃度不高, 一次的產物大概只能夠我做一次PCR, 所以要跑gradient PCR對我而言有點為難阿, 所以想問大家做後面PCR分析會用多少的DNA? 想問大家的看法及建議,謝謝! --



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◆ From: 120.126.52.35
1F:推 datro:100 ng biDNA太高 converting過後 吸光值很不準 通常我是當 08/16 02:15
2F:→ datro:當成100%轉換 稀釋後取10~20 ng的量去跑PCR 08/16 02:15
3F:→ datro:然後 PCR product直接定序 傳統定序訊號可能會很亂 08/16 02:16
4F:→ datro:通常不是接TA 定clone 就是用pyro-sequence的方式做會比較好 08/16 02:17
5F:推 dingoxp:之前也有過PCR沒產物 並且BS處理完濃度更低 08/23 20:39
6F:→ dingoxp:後來換個Taq與buffer就可以了 主要是因產物有二級結構 08/23 20:41
7F:→ travelmat:我是跑出來smear,沒專一性BAND ㄒ_ㄒ 08/29 12:27







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