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原文恕刪 參考了sephadex產品說明書 其中一段如下: Use 0.15 M NaCl or a buffer with equivalent ionic strength to avoid pH dependent nonionic interactions with the matrix. At very low ionic strength, the presence of a small number of negatively charged groups may cause retardation of basic proteins and exclusion of acidic proteins. 根據以上我的解讀是column的metrix是dextran, 帶有負電荷OH group,在極低的離子強度 假如sample帶有正負電荷都會和metrix產生吸附或是排斥現象.因此必須要使用0.15M鹽類 增加buffer的離子強度,減少sample與metrix的交互作用. 另外有提到 When working with a new sample, try these conditions first: 0.05 M sodium phosphate, 0.15 M NaCl, pH 7.0 or select the buffer into which the product should be eluted for the next step (e.g., further purification, analysis, or storage.) 意即使用時建議先試試看0.05M sodium phosphate + 0.15 M NaCl 問題來了!之前使用的buffer組成為D-PBS,本身緩衝濃度Sodium Phosphate Dibasic 8.10 mM, Potassium Phosphate Monobasic 1.47 mM, Sodium Chloride 138 mM 分離結果是看不到後面的小分子elute out 問題1:若改為說明書建議的配方, NaCl濃度沒差多少,而是差在緩衝溶液的濃度(50 mM)會不會 對於我的分離結果會有改善呢 問題2:我的大分子是SOD,在pH 7.4環境下應該不會帶特定電荷, 還需要這麼高(0.15M) 鹽類嗎? 由於sample快沒了 每一次的使用都盡量力求效率 請有經驗的大大指教!!! --



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◆ From: 210.60.122.10
1F:推 jason0919:鹽濃度和分離效率無關 只要你的東西可以流的出來就好 05/02 20:20
2F:→ jason0919:我沒特別加NaCl 用這種column也是可以分離 關鍵是你的溶 05/02 20:21
3F:→ jason0919:液的離子性夠大到讓你的蛋白不會黏在管柱上 05/02 20:22
4F:→ jason0919:你可以先try 只打buffer進去看小分子什麼時候流出來 05/02 20:23
5F:→ jason0919:還沒聽過小分子也流不出來的 既然你用手動 你怎麼detect 05/02 20:24
6F:→ jason0919:你的小分子? 05/02 20:24
7F:→ jason0919:照你的講法是用手動 你用導電度計測變化? 05/02 20:34
8F:→ premire:回j大 利用UV detect 05/03 01:09
9F:→ premire:所以j大之前的buffer是只有sodium phosphate不含NaCl囉? 05/03 13:21
10F:推 jason0919:前兩篇已經說明了 280nm吸收看不到glutathione 05/03 16:15
11F:推 jason0919:就算是用214, 220nm這些對有單鍵的東西吸收都很高 看不 05/03 16:19
12F:→ jason0919:到變化也是正常的 05/03 16:20
13F:→ premire:目前想法是看230附近的吸光值,因為buffer不太會有吸光值, 05/03 18:05
14F:→ premire:假如打純的GSH看到後面fraction在230附近有吸收,我也可以 05/03 18:05
15F:→ premire:認定大小分子確實有分離 05/03 18:06
16F:推 jason0919:您為何不加glutathione到buffer裡 看看吸光值有何變化 05/03 18:43
17F:→ jason0919:但我不太認為你會看的到 05/03 18:44
18F:→ jason0919:想了一下 搞不好可以 05/03 18:53
19F:→ jason0919:我只是很好奇你為什麼會想用吸收值來看它 05/03 18:56
20F:→ jason0919:230不是一個很好的地方啊 頗少看到人看這個點 05/03 18:58
21F:→ jason0919:如果你看到說明書 大概都是在用導電度看 最直覺 05/03 19:11
22F:→ premire:收集的fraction自然就有GSH+buffer,另外想用UV的原因是想 05/03 19:12
23F:→ premire:看到大分子小分子有先後分開的peak 05/03 19:15







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