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※ 引述《charlielg (chi)》之銘言: : 1.大腸桿菌是目前表現外源基因最常用的系統,然而大腸桿菌表現系統常遇到 : inclusion body的問題,他是一種不可溶物質,這裡所謂不可溶是指不可溶於水 : 還是不可溶於任何溶液? 其實不可溶物質這句話就有點怪怪的 因為還是可以藉由強烈的還原劑讓蛋白質溶在水中 比較偏向inclusion body這個大分子集團在細胞液中是不可溶 但protein則不一定 : 2.inclusion body是因為構型摺疊不正確而使其變成一種不可溶物質,因而造成活 : 性不佳,那是否當inclusion body變成可溶性也就代表活性會提升呢? inclusion body形成我覺得可以分成幾個方向來討論 第一個是protein在E.coli中是可以被正確folding 但是因為製造速度太快 在folding的嘗試過程中會因為分子間的距離太近 使得數個protein分子的hydrophobic domain互相黏在一起變大分子團 這種情況下我想降低溫度或IPTG濃度避免inclusion body 之後產生的protein活性會提升 第二種是在E.coli中無法正確folding 分子量太大或者太複雜導致怎樣嘗試都無法正確folding 或者E.coli的chaperone不賞臉不想幫 disulfide bond也不賞臉 O/E的protein hydrophobic domain一堆 Charge也一堆 這種我想就算想辦法讓他不要形成OB 但是做出來的protein也沒function 第三種是O/E的protein對E.coli有cytotoxic所以把它聚集起來 這種讓它不會形成OB..就換成E.coli死給你看 : 3.利用大腸桿菌來表現真核基因時,所表現出來的蛋白質會跟native form會差很多 : 嗎?如果會,那為何在很多實驗中還是要利用此系統呢?除了此系統便宜培養容易 : 及了解較深入之外,有其他考慮因素嗎? 我覺得是要考慮到實驗用途............(還有老闆的財力) 假如O/E的蛋白沒有太多的disulfide bond和太複雜的結構就用E.coli 需要多disulfide bond 微量phosphorylation就用Yeast 再需要多phosphorylation 微量Glycoslation就換Insect 要全部功能就用Mammalia cell =口=b 假如要研究的只是某個domain或motif也不需要用到full protein表現 就單純用E.coli 弄出那部份就好 (或者黑暗一點的.. 用full protein native form做出來是沒結果 科科) 或者在解結構上來說 上述那些post-translation modification會造成更難解析的結果 那到不如找個E.coli可以輕鬆拿到 又不會有太複雜後修飾的來搞 : 4.此系統最常被用來表現哪一類的外來基因(哪一類的蛋白質)? : 以上這些就是本人疑惑之處,希望這方面高手能為小弟提供點意見,感激萬分! 我不是高手 所以也希望有人可以訂正或補完 v( ̄︶ ̄)y --



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◆ From: 163.15.174.206
1F:推 sGoat:如同原po所說,做到哪種程度就使用哪種系統 10/09 09:28
2F:→ sGoat:如果只做簡單的化性或是domain function的話E.coli可以勝任 10/09 09:30
3F:→ sGoat:如果考慮到活性以及in vitro的表現,當然物種越接近的系統 10/09 09:31
4F:→ sGoat:會有愈好的狀態 10/09 09:32







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