※ 引述《aggaci (五子棋啦)》之銘言： : ※ 引述《[email protected] (wait till die)》之銘言： : : 那就不要用silver stain了.... : : 又醜又難控制染色的條件 : : 同一片gel我自己都不太敢確定 : : 是不是某塊地方染的比較久才比較深 : 我沒辦法ㄝ : 因為細胞沒辦法收那麼多 : 而又做TCA沉澱會損失一定的蛋白質 : 所以只能用銀染 : 至於SYPRO RUBY我門沒有螢光scanner... : 所以沒辦法用~ 我之前花了大概一年的時間在抓2D的條件 我不是高手啦 只能說在錯誤中學習 它真的是個機車的實驗 我想 我應該可以分享一點點小小的心得吧 1. total cell lysate 本來就很容易有一大堆雜七雜八的蛋白質 如果是因為你的lysis buffer鹽類含量太高而影響2D分析效果 進而要用TCA沉澱置換buffer 那勢必會lost許多蛋白質 我有個小小拙見 millipore叫做centricon的離心管 根據你的需要有不同的大小及容量 輕易的置換buffer 或者 直接利用2D專用的lysis buffer萃取蛋白質 2. silver stain很容易因為stop的時間不同而染過頭 當蛋白質量太多的時候 敏感的silver stain也會過度的偵測 通常會建議Ruby stain 但是如果沒有機器可以操作 silver stain可能還是要再多練練累積經驗才行 3. BCA kit偵測蛋白質量準確度有限 如果你要很精確的定量 倒不如用稀釋不同濃度的BSA跑SDS-PAGE 用內插法的方式定量 說不定會比BCA kit更準確 4. 膠片上之所以會有直線及橫線的產生 最主要可能有幾個原因 橫線的產生是因為 1D電壓因為lysis buffer中內含物產生電阻 使電壓未到達既定的電壓數 或是program完成或duration time過長所導致 原本到達定位的蛋白質 可能因為你的延遲時間太長而移位 直線的產生 可能是因為2D給予電壓過大 蛋白質還沒有在定點停住 就被強制向下推進 5. 膠片上會有一團團蛋白質點出現 排除可能是因為染過頭 或是蛋白質量loading太多 還有一個可能 就是你所分析的蛋白質多坐落在那個分析範圍內 如果你對那邊的蛋白質很有興趣 建議你縮小1D及2D的條件 應該可以看到很明顯的差異 6. 兩片膠是不是真的具有差異 除了眼睛肉眼上的判斷 這是在loading量相當 背景值類似的條件下 肉眼判斷才有意義 在2D上還有一種軟體叫"ImageMaster" 可以透過圈選蛋白質點 扣除背景值 選擇internal standard 計算出兩片膠上相同兩個點相對倍數關係 Trouble-shooting可以上amersham網站上看 應該可以解答你很多疑問才對 http://www.amershambiosciences.com 希望我這一點點小小拙見 對你的實驗會有幫助 祝你好運 我覺得做2D是一條不歸路 還是我太差勁了 Orz...... -- 找到一個會逗我笑的人 感冒快快好 要照顧好自己喔 --

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