※ 引述《uolink (uolink)》之铭言： : ※ 引述《ararthur ()》之铭言： : : 抱歉抱歉 : : 基本上我是从某个存菌管中以loop沾菌涂plate : : 挑选出正常的monocolony放到broth增菌 : : 而之後菌液则由假定的mutagen treat : : 希望能使这株菌突变成功 : : 我将以一定的菌量在抗生素plate上涂盘 : : 如果实验组有比控制组的colonies数还多的话 : : 就认定此假定mutagen的致突变率是存在的 : : 所以回到问题本身 : : 我并不能把存在-80度的存菌管只挑起最上部的冰来养 : 这里的 -80 菌液哪来的? 我假设你是用 mutagen treat 过的菌液全部做冻管 恩 是这样没错 : : 因为这样可能没办法把握住大部分突变过後菌株 : : 例如突变後密度变高的菌都沉到了eppendorf底部的话 : : 这样就取不到他们了 : 你就把冻管慢慢挑 一次挖一点养 直到挖完为止 : 这样不就全都取到了吗? 所以是说 就全部挖到新的medium里culture吗 : : 统整到最後想问的就是 : : 是否有办法可以从存菌管中尽量的取出各株经突变过的菌 : : 又如果能渐融後vortex取菌是最合理的 : : 但存菌管的菌渐融後他们的健康状态是否仍安好呢? : 不安好 : : 谢谢花时间收看 : : 希望能帮助我解答^^ : 你在一开始 mutagen treat 过的菌液 就应该要直接拿去涂盘了吧 : 去涂有该抗生素的盘子 不就可以筛出你要的抗药性突变了吗? : 为何要去做冻管在挑出来养? 我并不是要专只筛出抗药性突变的菌株 而是计算他长时间的mutation rate增加情形 那如此一来每天配的plates antibiotics活性 或任何条件等等 都可能会影响其比较的准确度 所以当时是想说 把每天收集的菌液留下 可以最後一次做对照 把所有的condition都尽量统整到相同 这样来的比较才比较有可信度 不晓得这样想法有哪里有问题吗 : 你把他们混在一起养有一个问题: 竞争优势 唔 这是我没有注意到的... 但同在LB medium里 会有什麽竞争的影响吗 有没有什麽可能的例子呢?? 谢谢你的回答 --

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