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※ 引述《polomi (polomi)》之銘言: : 版上大家好~ : 小弟目前正在進行有關E. colo同源重組的實驗, : 最終的確認是使用PCR判斷有無成功的插入到genomic DNA上。 : 如果是失敗的會保留原長度約為1.1KB, : 成功的話會改變其長度。 : PCR都是使用相同的primer跟相同的溫度條件設定。 : 萃取完DNA後, : 也有使用DNA clean kit做純化的動作。 : 有測量OD260/280算濃度。 : 每管每次PCR添加的genomic DNA template都固定約為200~300ng。 : 使用的polymerase為 ACCU DNA polymerase。 : http://www.yeastern.com/Products.php?pid=169&pkid=10&pttype=60 : 按照原廠建議使用。 : primer最終濃度為0.2uM : dNTP 最終濃度為 0.1mM : 每次都固定50ul : 可是最近幾次的PCR都無法出現結果。 : 有使用先前成功的template做對照。 : 有附圖說明,請參考。 : http://ppt.cc/to8T : 均為同時跑PCR的結果。 : PCR buffer是先除去template跟polymerase外先混合均勻, : 再分別添加的。 : 各項溫度的設定並未改變。 : 請問我有哪裡需要再做改變的? : 麻煩各位了 不好意思, 可能小弟上次說的不夠清楚。 因為目前正在做E. coli同源重組的實驗, 是對genomic DNA上的目標基因利用一段具有抗生素抗性基因做取代。 所以, 如果取代失敗的話, 用原本的primer去PCR的話, 應該還是原本的片段長度。 而如果取代成功, 片段長度會有所改變。 而預估如果成功的取代了原本的目標基因片段, 會從原本的1KB多變成約2KB左右的長度。 如果取代失敗的話, PCR的結果會直接呈現1KB的band出現, 但是目前的結果PCR後完全沒有任何的band產生。 小弟有做了比對的組別, 如圖, http://ppt.cc/to8T 應該可以證明PCR的polymerase與primer沒有問題。 是不是要對PCR的其他溫度條件與時間做改變。 目前的PCR溫度設定條件如下: 第一步: 94度C, 5分鐘。 第二步: 94度C, 30秒。 58度C, 30秒。 68度C, 2分30秒。 第三步: 68度C, 7分鐘。 結束。 使用的PCR儀器為BIO-RAD My Cycler。 請問, 如果從原先的1點多KB片段長度變成2點多KB, 是不是要修改那些PCR條件。 已經有嘗試過將annealing 溫度從58調整為 60 62 64過。 也有嘗試著將低到55。 但似乎都還是只有比對用的有成功產生band出現。 順帶請問一下, 請問這台PCR如果要做梯度溫度的分段PCR, 是不是要再另外購買什麼或是連絡廠商才能打開機器的權限? 感謝大家。 --



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1F:推 mesenchymal: 題外話: 也可以針對你換進去的片段設計primer 02/11 12:27
2F:→ mesenchymal: 例如F-primer target是Genomic, R-primer則是抗生 02/11 12:29
3F:→ mesenchymal: 素基因 02/11 12:30
4F:→ scherzoinb: 挑幾個菌去送定序吧~~~ 02/11 14:07
5F:→ scherzoinb: 你有沒有想過會不會是萃取的問題? 02/11 14:08
6F:→ scherzoinb: 所以才會建議你直接用菌下去p~~~原po加油~~~~~~ 02/11 14:09
7F:→ scherzoinb: 再仔細看看primer夾的位置跟取代位置的關係~~~ 02/11 14:11
8F:→ polomi: 不好意思 想請問 直接用菌下去P的條件要如何控制? 02/11 15:19







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