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小的是使用貼附型HSC-3細胞進行實驗 由於聽說medium及trypsin會影響測出來的螢光表現 所以有幾個步驟是特別去除medium跟trypsin的動作 我的實驗步驟如下: 1. 細胞總共分為四組: 不染染劑, negative control, positive control, 藥物組 2. 藥物組已事先加藥處理24小時, 而positive control則是使用550uM的H2O2處理一個 小時(in medium) 3. 將四組的medium吸除 加入20uM的DCFH-DA染劑 in 含5% FBS的PBS (不染染劑組不加 DCFH-DA) 37度C 30mins 4. 吸掉含染劑之5% FBS PBS 使用PBS wash 5. trypsin打下細胞 加入含0.2% FBS PBS的離心管中 6. 離心完後去上液 回溶 1ml PBS 上機 (流式細胞儀) 不過上機後的Data 將完全不染的組別螢光調至約10^0處時 發現光上negative control 螢光強度就爆衝到約10^3 而之後上positive control, 加藥組 螢光強度也與negative control幾乎相同 請問發生這種問題是因為染劑問題嗎? 還是因為我的實驗中有哪個步驟出現錯誤呢? 因為negative control就有這麼強的螢光表現實在不太尋常... --



※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc)
◆ From: 218.173.33.122
1F:→ williamyang:請問有分活死細胞嗎?死細胞的話會有訊號出現 08/07 23:24
2F:→ skyofsilver:沒有特別分耶! 08/08 13:53
3F:→ a001ou:為什麼完全不染的螢光要調到1阿? 不是應該直接拿Control 08/09 03:31
4F:→ a001ou:將訊號調到10^2來看增加還是減少嗎? 08/09 03:32
5F:→ ChesterYeah:活細胞死細胞沒差~是要進到細胞才會有螢光 (DCF-ROS) 08/11 16:47
6F:→ ChesterYeah:頂多是怕 background, washing 要乾淨 08/11 16:48
7F:→ ChesterYeah:也要看你細胞代數, 數量, 還有穩定度 才不會有過多ROS 08/11 16:49
8F:→ ChesterYeah:positive 太低 可能是下太猛了掛光光 Dye 進不去 08/11 16:50
9F:→ ChesterYeah:H2O2 是一個很好的 positive 08/11 16:52
10F:推 ChesterYeah:FBS 不影響 08/11 16:55
11F:→ ChesterYeah:Medium 我用 DMEM F12 也不影響 08/11 16:56
12F:推 bu105330:DISH或者FLASK本身就有螢光喔~建議seeding在玻璃上! 09/05 00:10
13F:→ Yuliangliang: 請問大大之後有找到問題點嗎~? 我最近也為此所苦... 06/13 18:49







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