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实验方式 我是做蛋白质纯化的大专生,我纯化出数个带有不同突变的相同蛋白质,用Bradford定量 到相同浓度後要做assay。 为了确保我不同时间做的定量结果都是相同的,所以我会把这些蛋白质在SDS PAGE上跑胶 ,用imageJ分析band的强度。 我用imageJ定量的方式 1. 选取我要定量的区域以及相同面积的背景 https://i.imgur.com/hiAAPuR.jpg
2. 定量强度 https://i.imgur.com/NkiMPPw.jpg
3.选择叠图 https://i.imgur.com/GwgimB6.jpg
4.叠图 https://i.imgur.com/WgGBlRU.jpg
遇到的问题 因为我发现我的背景值并不均匀,希望用叠图的方式消去背景。但好像没有叠图後再做面 积定量的网路教学,叠图後原本的面积定量功能(那个魔法棒?)就不能用了,我也自己 摸索了一阵子都没有头绪。 想请问的问题 想请问各位先进,该如何利用imageJ叠图并去除背景值。上述方法是我自己摸索出来的, 不确定是不是有更合适的方式。如果有其他方法也可以,谢谢各位! 更:解决方法 後来问到隔壁实验室的方法。是分别定sample跟背景值的讯号再相减,很简单就解决了哈 哈哈。 --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc), 来自: 110.30.0.230 (台湾)
※ 文章网址: https://webptt.com/cn.aspx?n=bbs/Biotech/M.1628330708.A.0C4.html
1F:推 CSFV: 如果用眼睛看不出背景有无差别的话,其实没有必要去消耶08/07 21:33
2F:→ CSFV: 如果要的话,我是土法炼钢定出每个lane的强度,丢进EXCEL08/07 21:34
3F:→ CSFV: 给他自己去减去08/07 21:35
4F:→ CSFV: 有时候太仰赖电脑定量反而会造成最後结果失真,个人经验啦08/07 21:36
5F:→ CSFV: 定量结果最好还是要符合眼睛看到的,毕竟放上论文或期刊的是08/07 21:37
6F:→ CSFV: 胶图本人,口委或审稿人通常还是眼见为凭08/07 21:38
7F:→ mor05431: 但像是我第二张图片左边跟右边的起始值有落差,虽然讯08/07 23:10
8F:→ mor05431: 号高度差不多但是要怎麽选最低点实在有点为难。08/07 23:10
9F:→ mor05431: 而且我这刚好是浓度有一样的sample, 其他的突变在胶图上08/07 23:14
10F:→ mor05431: 的浓度肉眼就看的出有差距,需要用imageJ定量修正做assa08/07 23:14
11F:→ mor05431: y时的加入量,所以还是希望要修正的话就修到最好不要被08/07 23:14
12F:→ mor05431: 背景值影响 08/07 23:14
13F:→ mor05431: 但还是谢谢C大的建议,我没有想过可以直接丢excel去算, 08/07 23:15
14F:→ mor05431: 我会试试看的!08/07 23:15
※ 编辑: mor05431 (110.30.0.230 台湾), 08/08/2021 19:15:16
15F:→ Ice9: 一般建议背景值不要选同一个 lane。取隔壁的吧,一条就够了 08/08 21:03
16F:→ Ice9: 。 08/08 21:03
17F:→ mor05431: 请问l大,有什麽特别的理由吗~ 08/08 22:16
18F:→ mor05431: 我自己觉得同一条lane的叠图起来比较漂亮才这麽选的, 08/08 22:17
19F:→ mor05431: 不知道一般大家怎麽选的。 08/08 22:17
20F:→ blence: 2不能当背景,要选背景应该是1的第四或第五lane 08/09 13:45
21F:→ Ice9: 有可能纯化不够好,上面有杂物。所以选隔壁。 08/10 08:57
22F:→ Ice9: b大有提到选第五,这是怕第三的样本不小心跑到第四去 08/10 09:00
23F:→ mor05431: 了解,我会比较看看这些方法 谢谢! 08/10 21:14







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