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发问时请注意,若是要问实验相关的问题,请将实验的步骤、所用的条件大致列出 以方便板友帮您追踪问题 若是求救事项涉及实验室智慧财产(例如细胞细菌植株、质体载体等)之分让, 请务必注明贵实验室愿意设立 正式合作 签署材料分让协议(MTA),否则版工将迳行删除 ----请将上列注意事项以 ctrl + k 删除後开始编辑文章---- 目前我做Competent cell 菌种是pro 5-alpha 做法是Rubidium Chloride method: 前一天先将菌养在10 ml O/N 隔天1/100加入培养 当A600到达 0.5 冰浴15min左右 用0.4被体积的Tfb I 冲洗,放冰上15 min 左右 再用1/100的 Tfb II 洗 ,放冰上 15min 左右 最後分装 50 ul,迅速放入液态氮 最後装盒放 -80度保存 隔天测效率: 分别用浓度 100pg / ul 1 ng / ul 10 ng / ul 的DNA,加入 5ul 冰上静置30 min,42度heat shock 1 分钟 迅速放冰上等5分钟 将细菌放入 1 ml 的LB,培养一小时 取 100 ul 图盘 结果效率却只有 5 * 10 ^5 效率颇低。。。 想请问有人做过该菌种吗? 还是有认为哪一步错了呢? 谢谢 Orz --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc)
◆ From: 163.25.93.195
1F:→ cool155113:对了,5*10^5 效率 是在浓度 10 ng / ul 的DNA中算到 11/19 18:29
2F:→ cool155113:100 pg / ul , 1 nl / ul的菌落很少,大约5~10颗 11/19 18:30
3F:→ cool155113:这是为什麽?? 谢谢 11/19 18:30
4F:推 Ianthegood:我觉得以chemical来说这浓度ok了阿 11/19 23:32
5F:→ cool155113:OK吗? 老师一直说一般来说效率为1*10^7以上 11/19 23:54
6F:→ cool155113:可是老师也不知道哪个步骤该改进。。。一直无限循环 11/19 23:55
7F:→ Ianthegood:efficiency的单位是cfu/ug 换算一下 11/20 08:57
8F:→ Ianthegood:我的话前两部冰浴会再久一点 11/20 08:58
9F:→ cool155113:efficiency的算法是,数到的菌落/DNA浓度*加入ul量 11/20 09:39
10F:→ cool155113:举例来说:10ng/ul,有1000颗 11/20 09:40
11F:→ cool155113:就是 1000/ 10 * 5 = 20 clone / ng 11/20 09:41
12F:→ cool155113:然後换算成 clone/ ug = 20000 clone/ ug 11/20 09:41
13F:→ cool155113:最後因养在1000ul 只取 100ul 涂盘,所以在 * 10 11/20 09:42
14F:→ cool155113:所以获得 2 * 10^5 clone / ug 的转质效率 11/20 09:43
15F:→ cool155113:有算错吗? 对了,其实有试过前两个步骤放久一点 11/20 09:44
16F:→ cool155113:可是效果还是一样 Orz 11/20 09:44
17F:推 icome:re-suspension多次一点效果更好 O.D.0.3左右效率就很高 11/23 18:20
18F:→ icome:0.5有点危险 过了0.5效率会陡降 11/23 18:20
19F:→ cool155113:想问一下,因为网路上的流程都是Tfb II加0.04倍的体积 11/23 18:51
20F:→ cool155113:但我们都是加0.01倍的体积,不知道这样回不会有影响 11/23 18:52







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