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大家好~ 又是ligation的问题要麻烦大家了 这次是学妹遇到麻烦了 vector:8k多 insert:一共有四组,有两组700多bp,一组800多bp,一个200多bp compentent cell:DH5α (不过是自己做的) restriction enzyme:NcoI (单点切) vector用酵素切完後,会用CIP处理 从胶上切下来,用kit纯化,回溶在水中 切的时间4hr以上或是overnight都有 insert切完之後,也是用kit纯化 之後回溶在水中 切的时间同vector 之後做ligation 16度,overnihgt V:I的比例是跑胶後,学长会给建议 所以比例都不太一定 然後transform 但是做不出来 之後再接到TA上 从TA上把insert切下来 但这里有一个问题 TA clone的plasmid都是用传统法抽的 浓度也都蛮浓的 之後用酵素切一切,不知道为什麽回收後的浓度都很淡 和vector进行ligation(比例一样听学长建议),结果一样失败 反覆做了几次,都接不上去 可以请教各位版友,还有没有什麽神技呢?? 谢谢~ --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc)
◆ From: 140.116.94.249 ※ 编辑: ennnnno 来自: 140.116.94.249 (02/07 16:41)
1F:推 conective:1.胜任细胞测过效率吗 差1-2个log就决定有没有colony 02/07 17:20
2F:→ conective:2.insert回收浓度多少 有跑过电泳确认吗 02/07 17:21
3F:→ conective:3.V:I比例多少? 学长建议是什麽条件 02/07 17:21
1.胜任细胞效率10的六次 2.insert回收浓度都很淡,直接跑胶check,几乎是快看不见的那种 (load1μl) 3.v:I我就不清楚了,学长是依跑胶後的亮度去看的
4F:推 leoblack:ligase是哪家的?! 02/07 17:21
ligase 是NEB的
5F:→ conective:4.作不出来是指都没有菌落还是挑起来再抽都不是接好的 02/07 17:22
有时候都没长,但有长的也挑不到= =
6F:→ conective:5.有作自接的control吗? 02/07 17:22
自接的control是没做... ※ 编辑: ennnnno 来自: 140.116.94.249 (02/07 18:16)
7F:→ lyu0001:check E.coli competency at leat 10^5/microgram plasmid 02/08 15:15
8F:→ noble019:ligation buffer确定一下ATP还有没有效率 02/08 16:22
9F:→ noble019:重复冷冻解冻常会失效.换一罐buffer试试看 02/08 16:23
10F:→ qumai:提高DNA的浓度吧 02/08 23:49
11F:推 kingbar:建议试试看用KIT抽的plasmid做酵素剪切吧~我也曾经遇过用 02/09 02:15
12F:→ kingbar:传统法抽的去切,虽然plasmid原始浓度比较高,但切完回收 02/09 02:18
13F:→ kingbar:效率就是比较低... 02/09 02:18
14F:推 kingbar:还有依我自己的经验,这种有可能自接的ligation,insert比 02/09 02:30
15F:→ kingbar:例要比普通ligation要高一点,成功机会比较高。 02/09 02:33
16F:→ ennnnno:谢谢K大~ 02/10 09:46
17F:推 bluecsky:传统法抽的plasmid其实纯度比较差 不然kit怎麽卖.. 02/12 17:01







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