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各位大大 我最近跑PCR的negative control都会有band,我们实验室其他人也都遇到一样的问题 而且band的大小每个人都不一样,都刚刚好跟自己主要sample P出来的大小一样 我试了一些方法想找出原因,但是结果越来越奇怪 我先说明一下大致的方法: 我的negative control是用DDW(灭过菌并分装)当template 两股primer也都会从stock中分装出来,primer夹出来片段的大小约900bp Taq酵素的使用非常频繁,应该不会有污染的状况 ------------------------------------------------------------------------------ 实验的材料做一个说明 我的DDW分为 旧DDW(原本使用的)及新DDW(新分装到tube中) primer分为 旧primer及新primer ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 第一个实验:有加我的样品一起跑,但是NC都是先加的 NC:旧DDW+旧primer 结果:NC跟我的样品跑出一样大小的band ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 第二个实验:纯粹跑旧DDW+旧primer (不加其他sample) 跑11管 结果:全部都有大约900bp淡淡的band ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 第三个实验:有旧DDW.新DDW+旧primer.新primer sample 结果(O.X) O代表有band;X代表没有band ——————————————————— 1.旧DDW+新primer F+R X 2.旧DDW+新primer F X 3.旧DDW+新primer R X 4.旧DDW X 5.新DDW X 6.新DDW+旧primer F+R O 7.新DDW+新primer F+R O 所以怀疑是新的水有污染 ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 第四个实验: sample 结果 ————————————————— 1.旧DDW+旧primer F+R X -与第1.2次实验不符 2.旧DDW+新primer F+R O -与第3次实验不符 3.新DDW+旧primer F+R O 4.新DDW+新primer F+R O ------------------------------------------------------------------------------ 真的非常感谢耐心看完以上内容的大家 我写的不知道大家有没有了解 如果看懂我打的内容,希望可以给我一些建议 因为要做分析实验,所以需要NC 如果解决不了,其他的data都不准确 拜托!!拜托!! --



※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc)
◆ From: 61.227.162.43
1F:推 match308:以前有没有人做过类似的sample呢 有的话可能是从旧sample 11/22 05:22
2F:→ match308:还在环境中造成的contamination,试看看去其他bench操作 11/22 05:23
3F:→ match308:完全隔绝你现在用的东西,置於实验的不一致,可能跟每次 11/22 05:24
4F:→ match308:contamination多少和primers bind到contaminants上的状况 11/22 05:26
5F:→ match308:不同而异吧 11/22 05:26
6F:推 h3250sam:酵素使用频繁是指很快就会用完吗? 不然在共用情况下 11/22 06:08
7F:→ h3250sam:又使用频繁 很容易有污染的情形 11/22 06:09
8F:→ kutoushinji:实验室有其他人拿自己ㄉsample去间lab做,NC一样会跑出 11/22 12:34
9F:→ kutoushinji:跟他sample一样大小的band,酵素是买混好buffer的,所以 11/22 12:36
10F:→ kutoushinji:平均一管不到一个礼拜就用完了,且我第一个实验跟第二 11/22 12:37
11F:→ kutoushinji:个实验用的酵素都不同管,我都是第一个开封的人 11/22 12:38
12F:→ kutoushinji:我甚至跑到操作台里面做NC也会有BAND 11/22 12:39
13F:推 bider:pipetman也是用其它lab的吗 11/22 17:42
14F:推 hilarity:用filter tip看看是不是pipet的问题 11/22 19:38
15F:→ kutoushinji:去其他lab就是用他们lab的pipetman与tip 11/22 22:13
16F:推 yaliu:看你第四个实验,很像是水的问题...瓶子洗一洗,重新装水吧 11/22 22:26
17F:→ yaliu:primer再重新稀释 11/22 22:26
18F:推 conective:primer是用什麽水稀释的? 11/23 09:53
19F:→ kutoushinji:我们的primer都是用TE稀释的,目前我把primer跟水都换 11/24 02:39
20F:→ kutoushinji:过了,而且都拿去晒UV,目前结果是OK的!希望可以维持久 11/24 02:41
21F:→ kutoushinji:一点(晒UV的只有水)谢谢大家提供的意见!!! 11/24 02:42
22F:推 sunnyforever:小建议供参考 先以乾净的血清瓶装水(100ml即可) 11/24 13:32
23F:→ sunnyforever:灭完後再以1.5ml tube分装供PCR相关使用 11/24 13:33
24F:→ sunnyforever:如此较可确保不会因公用而污染这些物品 11/24 13:34
25F:→ sunnyforever:不过比较耗tube就对了~参考罗! 11/24 13:34
26F:推 yaliu:推楼上,我之前都是这样做的~反正水很便宜,用完一次就丢了 11/24 23:52







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