作者glencan (罐头一个)
看板Biotech
标题Re: [求救] Western 的band糊糊的
时间Fri Apr 10 12:39:18 2009
※ 引述《abbyyam (ㄟ逼)》之铭言:
: ※ 引述《abbyyam (ㄟ逼)》之铭言:
: : 小弟最近做Western遇到的困扰是我的Target protein的band都糊糊的
: : 不够shape,所以让老板非常的不满
^^^^^^^^^^ 哈~我最近也遇到这个问题,洗出来的和原po简直一样,昨天刚解决 @@
: : 但是在actin的部分就很OK
^^^^^^^^^^^^^^^^^^我比您糟一点,我连Actin都糊掉了 >"<
: : 我的target protein的大小是50~55kDa左右
^^^^^^^^^^ 我的是60kDa (P-Akt)
: : 胶用过10%和12%的
: : Transfer是400mA 2.5hr (in ice bath)
: : 所以到底是哪边出了问题呢?
: : 烦请帮忙 > <
: http://www.wretch.cc/album/album.php?id=abbyyam&book=12
: 图在此
: 另外我跑胶是用80V和100V在跑的
^^^^^^^^^固定伏特跑胶我没试过,我是固定安培
不过共通点应该都是不能跑太快 or 太慢
跑胶的时候如果发现marker已经开始糊了,就可以停止了
不够sharp,我这边做的修改有:
1.压片时间缩短 (大约五分钟左右就可以了)
2.电泳时间不要太短 or 太长
之前一开始赶时间就用40mA跑到底,只花了一个多小时,
不过出来的结果就是不够sharp (要速度没品质 ˊˋ)
後来用20mA跑约两小时,过了stacking gel後改成40mA跑,效果不错!
我老板说他以前至少都跑三小时... \囧/
3.12% gel改成 15% gel
这边就比较注意一下,电泳的时候,15% gel会比较慢,
而且band 的间距会比较小,会花比较多时间跑
如果观察到marker已经开始糊糊的,就该停止罗~
4.transfer 我是用200mA 2hr (in 4度C 冰箱)就很够用了
stir有转动齁?!之前有一次没注意到,结果出来的band...%&*#$
transfer的时候温度太高也会让band糊掉,严重的就什麽都没了 >"<
400mA我觉得有点过高了,我最高只用过250mA 3hr
5.transfer buffer如果颜色有点蓝蓝的就重配吧
表示 marker 已经 "溶"(不知要怎麽形容) 进去了...
transfer的效果就不好了
希望以上我的经验能有帮助,
祝 原po实验顺利喔 ^^
阿...这里我想请问一个问题:
我的band颜色都很浅,没办法像原po黑的那麽漂亮
请问除了 显影水 一抗 二抗 外,还有可能有哪些原因呢? 谢谢
--
※ 发信站: 批踢踢实业坊(ptt.cc)
◆ From: 140.127.227.179
1F:推 ordinary07:发光剂 还有本身protein的量 04/10 13:58
2F:→ ordinary07:如果连actin都很弱 显影拉长 换家底片 换萤光试剂 04/10 14:00
3F:→ glencan:我是100ug/well...恩,发光剂我没想过,谢谢提醒 ^^ 04/12 10:05
4F:推 tsubasawolfy:100ug/well...那是肉眼都可以Actin闪闪发亮的程度了 04/12 15:26
5F:→ glencan:Actin满清楚的(50ug),主要是我的p-Akt不够黑 04/13 09:37