作者ronall (昵称小公主的!扣十分先)
看板Biotech
标题[问题] 使用Urea deaggregation後回收率?
时间Wed Aug 29 00:03:11 2007
抱歉
小弟又来请教各位了
小弟纯化蛋白後
发现蛋白有aggregation的现象
我担心这会影响我的蛋白产率
所以想使用Urea去deaggregation
之後想使用透析的方式除去Urea
我想问的是
refolding回来且为正确结构的蛋白能有多少?
因为我有问过我家的博士後
他跟我说别将urea处理後的蛋白混在正常结构的蛋白中
他认为refolding的结构不确定正确与否
必须经由CD去监定
不知各位有什麽样的想法呢?
==========================细节说明讨论发起线==================================
先感谢各位大大的回应
包含前面用水球丢了我好几次的大大
我想就我的想法说明好了
确实
当"产量"够的时候
(产量定义为足够我进行实验的用量)
我确实是不需在乎aggregation的部分
但是当我产量不够的时候
我必须额外再生产一批
(不含等待的纯工作天约14天)
因此小弟在评估从沉淀中将aggregation作denature并使其refolding
这样的方式在时间上以及程序上是否比较有利?
然
我的实验室并没有人做过这样的实验
我想问的是
博士後认为我必须将urea处理的沉淀
与上清液的正常蛋白分开处理
因为他觉得refolding miss的机会很大
所以认为我必须分开处理後再以CD或其他方式去监定结构
但我认为
我知道refolding miss的机会存在
但也不能否定正常foding蛋白的存在
同时
我实验用的蛋白其Apo-,Holo-两种构型仅有些许不同
PI值分别为3.2, 3.3
PI值差距这麽小的情况下能够以Q-sepharose分离
那麽
folding miss的蛋白我认为应该也能够被分离
既然能被分离
那为何我还必须独立处理这个部分呢?
这个部分是我最想知道的
感谢各位罗^_^
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◆ From: 61.225.207.88
1F:→ sisyphus:假如这边很多人说可以正确FOLDING回去你就不做CD了吗? 08/29 10:04
2F:→ content71:aggregation比例不高的话,就收正常结构的蛋白就好了吧 08/29 12:19
※ 编辑: ronall 来自: 140.120.9.44 (08/29 13:05)
3F:→ ronall:现在就是我怀疑aggregation比例过高 08/29 13:05
4F:→ ronall:因为我是做突变蛋白,突变的蛋白电荷有改变,感觉特别容易 08/29 14:20